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原代細胞培養(yǎng)的幾種常見技術

[2017/3/16]

原代細胞傳代技術

一、貼壁細胞的消化法傳代
1、吸除或倒掉瓶內舊培養(yǎng)液。
2、加入1ml左右消化液(胰蛋白酶或與EDTA混合液)輕輕搖動培養(yǎng)瓶,使瓶底細胞都浸入溶液中。
3、消化2-5分鐘后把培養(yǎng)瓶放置在顯微鏡下進行觀察,發(fā)現原貼壁的細胞逐漸趨于圓形,在還未漂起時,棄去消化液,加入培養(yǎng)液終止消化。
4、用吸管將貼壁的細胞吹打成懸液,分別接種到另外兩到三個培養(yǎng)瓶中,置37℃培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。第二天觀察貼壁生長情況。

二、懸浮細胞的傳代
1、直接傳代 
① 讓懸浮細胞慢慢沉淀在瓶底后,將上清吸掉1/2-2/3。
② 用吸管吹打形成細胞懸液后,分別接種到另外兩到三個培養(yǎng)瓶中,置37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
2、離心法傳代
 ① 將細胞連同培養(yǎng)液一并轉移到離心管內,離心800-1000rpm,5分鐘。
② 去除上清,加新的培養(yǎng)液到離心管內,用吸管吹打使之形成細胞懸液。
③ 將細胞懸液分別接種到另外兩到三個培養(yǎng)瓶中,置37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

原代細胞凍存技術

1、選用生長情況好,數量較多的原代細胞,凍存前一天換液一次。

2、貼壁細胞需用0.25%胰酶常規(guī)消化將細胞消化下來,將細胞懸液收集至離心管中。
3、1000rpm離心5分鐘,棄上清液。
4、沉淀加含DMSO的培養(yǎng)液,計數,調整至(1-10)×106/ml。

5、將懸液分至凍存管中,每管1ml。

6、密封凍存管,封口一定要嚴,否則復蘇時易出現爆裂。
7、用記號筆標明細胞種類,凍存日期。

8、按下列順序降溫:室溫→4℃(20分鐘〕→冰箱冷凍室(30分鐘)→超低溫冰箱(—80℃過夜)→液氮。

原代細胞復蘇技術

1、取出細胞,迅速放入37℃溫水中快速解凍。
2、吸出細胞懸液,并加10倍以上培養(yǎng)液。
3、1000r/分鐘離心5分鐘,去除上清。
4、用培養(yǎng)液適當稀釋后接種培養(yǎng)瓶,放入37℃ CO2培養(yǎng)箱靜置培養(yǎng)。
鏡檢細胞貼壁能力。次日更換一次培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)。

原代細胞染色技術

一.臺盼藍染色
1、制備單個細胞懸液,并作適當稀釋(106細胞/ml)。
2、染色:取9滴細胞懸液移入小試管中,加一滴0.4%臺盼藍溶液,混勻。
3、計數:在3分鐘內,用血球計數板分別計數活細胞和死細胞。
4、鏡下觀察,死細胞被染成藍色,而活細胞拒染。
5、按公式計算細胞活力。 
 
二.伊紅Y染色

1、制備1×106-5×106細胞/ml的細胞懸液。
2、取0.1ml細胞懸液加0.1ml伊紅Y染液混合。
3、用計數板鏡下計數活、死細胞數。
4、鏡下觀察,著紅色的為死細胞。按公式計算細胞活力。
 
三.苯胺黑染色實驗

1、制備1×106-5×106細胞/ml的細胞懸液。
2、將1份1%苯胺黑溶液與含血清生理鹽水作1:9混合稀釋,使其成0.1%苯胺黑染液。
3、取0.1ml細胞懸液加0.1ml苯胺黑染液混合。室溫放置10分鐘。
4、用計數板鏡下計數 ,黑色細胞為死細胞,按公式計算活細胞率。 
  
原代細胞計數技術

1、準備計數板:用酒精清潔計數板及專用蓋玻片,然后輕輕拭干。
2、制備細胞懸液:用消化液分散單層培養(yǎng)細胞或直接收集懸浮培養(yǎng)細胞,制成單個細胞懸液。要求細胞密度不低于104/ml,若細胞數很少,應將懸液離心(1000rpm,2分鐘),重懸浮于少量培養(yǎng)液中。
3、加樣:用習慣輕吹打細胞懸液,取少許細胞懸液,在計數板上蓋玻片的一側加微量細胞懸液。
4、計數:計算計數板四大格細胞總數,壓線細胞只計左側和上方的。然后按下式計算:細胞數/ml=4大格細胞總數/ 4×10000。